压力性褥疮（PU）模型

压力性褥疮（Pressure Ulcers，PU），也称为压疮或褥疮，是由于身体局部组织长时间受到压迫，导致血液循环受阻，组织缺血缺氧，进而引起皮肤和/或皮下组织的损伤和坏死。这种损伤通常发生在骨突部位，如骶骨、脚跟、臀部、肘部等，这些部位的皮肤和软组织较薄，且缺乏脂肪垫的保护。

压力性褥疮的发展可以分为几个阶段：

Stage 1：皮肤完整，但出现红斑，局部温度可能略高或略低，按压时不褪色。

Stage 2：部分表皮层缺失，可能表现为浅表的溃疡或水泡。

Stage 3：损伤扩展到皮下组织，形成较深的溃疡，但未穿透筋膜层。

Stage 4：损伤深入到肌肉、骨骼或支持结构，可能伴有组织坏死和感染。

预防压力性褥疮的关键措施包括定期翻身、使用减压床垫、保持皮肤清洁干燥、改善营养状况等。治疗压力性褥疮则可能需要清创、局部护理、使用特殊敷料、抗生素治疗以及在严重情况下进行手术治疗。压力性褥疮在长期卧床或坐轮椅的患者中较为常见，尤其是老年人、营养不良、糖尿病、神经系统疾病患者等高危人群。国内外研究者通过动物实验和临床实验对压力性溃疡的发生、发展过程进行了大量的论证，然而由于其发病机制复杂，所以进一步的深入研究仍在继续。目前主要的假设包括缺血、缺血-再灌注等机制。

动物建模方法：

缺血-再灌注损伤方法

通过在裸鼠臀部肌肉下埋置铁片，外部用磁铁加压的方法构建各期缺血再灌注压力性溃疡模型。此研究中以1.29T的压力持续加压2h，解除压力1 h为1个循环，分别在第1、4、6、8、10个循环观察受压组织的形态学和病理学变化。

适用动物：

小鼠/大鼠/巴马小型猪

建模过程：

以大鼠为例，造模前大鼠禁食 12 h，自由饮水，腹腔注射10%水合氯醛麻醉后，大鼠双后肢脱毛处理。之后将大鼠仰卧受压于压力性溃疡加压装置上，给予 3个周期的 I /R( I =缺血2. 0 h，R=再灌注0. 5 h) ，合计 7. 5 h。通过3个周期、 历时 7. 5 h 对大鼠股薄肌的压迫，可以成功复制大鼠压力性溃疡模型。

模型验证：

病理HE染色显示，正常对照组结缔组织疏松，无炎细胞浸润、血管扩张及充血等，模型组可见大量炎症细胞浸润，血管扩张、充血明显。

注意事项：

压力性褥疮（也称为压疮或压力性溃疡）动物模型用于研究褥疮的发病机制、预防和治疗方法。建立这些模型需要仔细考虑以下注意事项，以确保实验的有效性和伦理合规：

1. 动物选择
选择合适的动物模型对于研究的成功至关重要。常用的动物模型包括小鼠、大鼠、兔子和猪。

小鼠和大鼠：由于其基因组和生理特征与人类相似且易于操作，是常用的模型。
兔子：由于其皮肤结构与人类更为相似，也常用于压疮研究。
猪：皮肤结构和愈合特性与人类非常相似，但费用较高，操作复杂。
2. 压力源的选择
机械压力：使用标准化设备（如加重砝码、压力板或气囊）施加可控的压力。
持续压力和间歇压力：研究不同类型的压力对皮肤和组织损伤的影响。
3. 压力强度和持续时间
压力强度：应根据动物体重和皮肤耐受性调整。过高的压力可能导致急性损伤，过低的压力可能无法诱发压疮。
持续时间：确定压力施加的时间长度和间歇时间，以模拟临床实际情况。一般而言，长时间持续压力容易导致严重的组织损伤。
4. 动物护理和伦理
动物伦理：所有实验应符合动物伦理委员会的要求，确保实验的伦理合规。
疼痛管理：使用镇痛剂和麻醉剂减轻动物的疼痛和不适。
健康监测：定期检查动物的健康状况，确保其在实验过程中处于最佳状态。
人道终止：在动物出现严重痛苦或无法忍受的情况下，应人道终止实验。
5. 实验环境控制
温度和湿度：保持适当的温度和湿度，防止外部环境对结果的影响。
清洁和消毒：确保实验设备和环境的清洁，防止感染。
6. 数据收集和分析
标准化评估方法：使用标准化的评估方法和工具（如组织学染色、影像学评估）测量压疮的严重程度和愈合情况。
样本大小和重复实验：确保足够的样本大小和实验重复次数，以获得可靠的数据。
7. 实验设计
对照组设置：设立适当的对照组（如未施加压力的对照组、不同压力强度和时间的实验组）以对比研究。
随机化和盲法：在实验设计中引入随机化和盲法，减少偏倚，提高结果的可靠性。
8. 模型的可重复性和可比性
详细记录实验条件：详细记录所有实验条件和操作步骤，以便他人能够重复实验。
与人类临床相关性的评估：考虑动物模型与人类压力性褥疮的相似性和差异，评估实验结果的临床相关性。